PCR擴增試劑盒是分子生物學領域的重要工具，其工作原理基于聚合酶鏈式反應(PCR)技術，核心是模擬DNA在生物體內的自然復制過程，通過體外酶促反應實現特定DNA片段的指數級擴增。其工作流程可分為三個關鍵步驟，構成一個循環周期：
 

　　1.變性：將待擴增的DNA模板加熱至94-98℃，使雙鏈DNA解離成單鏈。這一步驟通過破壞氫鍵實現DNA的解旋，為后續引物結合提供單鏈模板。
 

　　2.退火：溫度降至50-65℃，試劑盒中的特異性引物與單鏈DNA的互補序列結合。引物是短的單鏈DNA片段，通常長20-30bp，確保僅目標區域被擴增。
 

　　3.延伸：溫度升至72℃左右，耐熱的Taq DNA聚合酶以dNTPs為原料，沿模板合成新的DNA鏈。此過程遵循堿基互補配對原則，形成完整的雙鏈DNA。
 

　　通過重復上述循環，目標DNA片段的數量呈指數增長，理論上經過n次循環可擴增至2n倍，從而實現微量DNA的高效檢測。
 

　　PCR擴增試劑盒的使用注意事項：
 

　　1.試劑操作
 

　　-加入順序：注意加入試劑的順序，以保證所有反應板孔溫育的時間一致。
 

　　-防止污染：使用干凈的塑料容器配置洗滌液，避免不同批次試劑間的交叉污染。
 

　　-試劑保存：底物A易揮發，應避免長時間打開蓋子；底物B對光敏感，需避光保存，且避免用手接觸，因其可能有毒。實驗完成后應立即讀取OD值。
 

　　2.樣本要求
 

　　-采集保存：需使用無菌采集管收集疑似感染樣本(如肺泡灌洗液、血液或組織)，避免污染。臨床樣本需在生物安全柜中操作，符合二級生物安全防護要求。短期保存(≤7天)可置于2-8℃；長期保存需-20℃或-80℃，避免反復凍融導致核酸降解。
 

　　-純度質量：合成的引物必須是ULTRAPAGE或者HPLC級別，其他純化方式PCR擴增后，會造成擴增條帶不全或者模糊。提取的DNA模板必須純度高(OD260/280>1.80)。
 

　　3.設備校準
 

　　-定期校準移液器、熱循環儀等關鍵設備，確保溫度控制準確性和液體轉移準確性。